保存条件 

      常温（10~25℃）保存 12 个月，其中 Proteinase K 保存条件 -20℃。 

产品简介 

      本试剂盒可从≤25 mg 新鲜或冷冻的动物组织（比如鼠尾、鼠趾、肝脏等）、血液、细胞中快速提取基 因组 DNA。 试剂盒采用优化的缓冲体系，使裂解液中的DNA高效特异地结合到硅基质吸附柱上。提 取过程无需使用苯酚或氯仿等有毒溶剂，得到的 DNA 浓度和纯度高，可直接用于酶切、PCR、文库构建、 Southern Blot、分子标记等下游实验。 

产品特点 

   ⚫ DNA质量高：提取的DNA浓度和纯度较高，适用于对浓度、纯度和完整性要求较高的下游实验；

   ⚫ 安全低毒：无需酚、氯仿等有毒试剂。

适用范围 

       本品适用于冷冻或新鲜动物组织样本、新鲜血液、细胞样本的基因组DNA提取。

注意事项 

   1. 第一次使用前，按瓶上标签要求在 Buffer GW1 和 Buffer GW2 中加入相应体积的无水乙醇；

   2. 使用前请检查 Buffer GA1 和 Buffer GA2 是否出现沉淀，如有请于 37˚C 水浴溶解后使用； 

   3. 若下游实验受 RNA 影响较大，可在步骤 2 结束后按照要求加入 RNase A（目录号： BN20386）；

   4. 为保证基因组 DNA 得率及完整性，样品请勿反复冻融； 5. 所有离心操作均在室温下进行。

使用方法 

   1) 血液及细胞样本： 

   1. 样本处理

   a. 哺乳动物抗凝血液（无核红细胞）：直接向 50~200 μL 新鲜或冷冻的抗凝血液样品中加入 Buffer GA1 补足至 200 μL； 

   b. 禽类，鸟类，两栖类或更低级生物的抗凝血液：其红细胞为有核细胞，取 5~20 μL 新鲜或冷冻的 抗凝血液样品，加入 Buffer GA1 补足至 200 μL； 

   c. 贴壁培养的细胞：应先处理为细胞悬液（最大提取量为 5×106个细胞），10,000 rpm（~11,200× g）离心 1 min，弃尽上清，加 200 μL Buffer GA1，振荡至样品彻底悬浮； 

注意：如需去除 RNA，可在上述步骤完成后，加入 4 μL 浓度为 100 mg/mL 的 RNase A 溶液（目录号： BN20386），涡旋 15 s，室温放置 5 min。 

   2. 加入 20 μL Proteinase K 溶液，混匀后加入 200 μL Buffer GA2，涡旋振荡充分混匀，70˚C 水浴 10 min； 

   3. 短暂离心以去除管盖内壁的水珠。加入 200 μL 无水乙醇，涡旋振荡充分混匀，短暂离心，进入步骤 4 过柱纯化；

   2）动物组织样本： 

   1. 样本处理：正确的组织取样量是获得理想产量和纯度的关键。初次使用时，推荐动物组织量为 10~15 mg， 根据实验过程及结果再调整用量。样品可用液氮研磨，或机械/玻璃匀浆器等工具 进行匀浆。

   a. 针对普通动物组织、内脏组织等易于研磨的样本： 

   液氮研磨：将研磨后的样品置于 1.5 mL 离心管中，加入 200 μL Buffer GA1； 

   匀浆器匀浆：匀浆前向样本中加入≤80 μL Buffer GA1 进行匀浆，匀浆后再加入120 μL Buffer GA1； 

   b. 针对鼠尾等含较硬组织的样本（过夜消化 6~8 h）：将组织样品直接置于 1.5 mL 离心管中，加入 200 μL Buffer GA1； 

注意：确保各组织的量不超出推荐范围。样品量过多可能导致裂解不充分，导致裂解液粘稠堵塞吸附柱， 可能造成提取失败或得率低。 

   2. 加入 20 μL Proteinase K (20 mg/mL)，涡旋振荡彻底混匀。普通动物组织 56˚C 水浴充分裂解 1~3 h（鼠尾等较硬样本需过夜消化 6~8 h），期间可数次颠倒或振荡使样品分散。如需去除 RNA， 可在此步骤完成后，加 入 4 μL 浓度为 100 mg/mL 的 RNase A 溶液（目录号：BN20386），涡 旋振荡 15 s，室温放置 5~10 min； 

注意：若涡旋振荡或孵育后仍有胶状物，可再次加入 20 μL Proteinase K 后孵育或延长孵育时间。

   3. 加入 200 μL Buffer GA2，涡旋振荡充分混匀，70˚C 水浴 10 min。短暂离心后加入 200 μL 无水乙 醇， 立即涡旋振荡充分混匀（此步骤可能会产生白色沉淀，不影响后续实验，某些组织如脾、肺，可 能形成溶胶状产物，此时推荐进行剧烈振荡或涡旋处理），进入步骤 4 过柱纯化； 

过柱纯化： 

   4. 短暂离心，将步骤 3 所得溶液和絮状沉淀全部加入吸附柱中（吸附柱放入收集管中），12,000 rpm（~13,400 ×g）离心 30 s，倒掉收集管中废液，将吸附柱重新放回收集管中，若一次不能加 完溶液，可分多次转入； 

   5. 向吸附柱中加入500 μL Buffer GW1（使用前检查是否已加入无水乙醇），12,000 rpm（~13,400 ×g）离心 30 s，倒掉收集管中废液，将吸附柱重新放回收集管中； 

   6. 向吸附柱中加入600 μL Buffer GW2（使用前检查是否已加入无水乙醇），12,000 rpm（~13,400 ×g）离心 30 s，倒掉收集管中废液，将吸附柱重新放回收集管中； 

   7. 重复步骤 6 ； 

   8. 12,000 rpm（~13,400×g）离心 2 min，开盖室温晾干数分钟；

注意：此步为去除残余漂洗液，不可省略。 

   9. 将吸附柱置于新的离心管（自备）中， 向吸附膜中间部位悬空滴加 50~200 μL Buffer TE 或 ddH2O，室温放置 2~5 min，12,000 rpm（~13,400 ×g）离心 2 min，收集 DNA 溶液，-20℃ 保存 DNA。

注意：

   1) 若需增加产量，可将得到的溶液重新加入到吸附柱中，室温放置 2~5 min，12,000 rpm（~13,400×g） 离心 2 min； 

   2) 如果下游实验对 pH 值或 EDTA 敏感，可以用灭菌水洗脱。洗脱液的 pH 值对洗脱效率有较大影响， 若用水作洗脱液应保证其 pH 值在 7.0~8.5（可以用 NaOH 将水的 pH 值调到此范围），如需长 期保存，推荐用 Buffer TE 洗脱并于 -20°C 保存。 

常见问题与解决办法 

   Q1：柱子堵塞？ 

   A1： 

   1) 样品用量过多。建议按照说明书推荐量进行提取，尤其是富含 DNA 的组织需注意减少用量； 

   2) 样品未充分裂解或研磨。充分裂解或研磨样品，鼠尾组织建议过夜消化；

   3) 离心温度过低。本产品使用操作均在室温下进行。 

   Q2：DNA 得率低？ 

   A2： 

   1) 样品裂解不充分。若样品过量则适当减少样品量，延长56˚C孵育时间，或在步骤 2 中再加入 20 μL Proteinase K（20 mg/mL）消化；

   2) 样品用量过少。建议按照说明书推荐量进行提取；

   3) 样品材料质量不好。尽量选用新鲜组织样品，样品采集后应液氮速冻，然后置于-80℃保存，建议尽快提取，避免反复冻融。 

   Q3：后期实验受 RNA 影响？ 

   A3： 

   1) 未加入 RNase A 消化。若后续实验需要去除 RNA 影响， 可按照说明书步骤加入 RNase A 消化； 

   2) 样品中RNA含量过多。可适当增加 RNase A 用量或延长消化时间。